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mercredi 11 octobre 2023

Des scientifiques utilisent CRISPR pour rendre des poulets résistants à l’influenza aviaire

«Des scientifiques utilisent CRISPR pour rendre des poulets résistants à l’influenza aviaire», source article de Lisa Schnirring paru le 10 octobre 2023 dans CIDRAP News.

Alors que de nombreux pays se préparent à plus d’épidémies d’influeza aviaire hautement pathogène dues à la migration saisonnière des oiseaux et aux changements climatiques, des scientifiques du Royaume-Uni ont rapporté que l'élevage de poulets capables de résister aux virus - avec l'aide de la technologie de l'édition du génome CRISPR - est prometteur en tant qu'outil pour combattre la maladie.

Détaillant leurs découvertes dans Nature Communications, l'équipe a élevé des poulets en utilisant des techniques d'édition du génome pour modifier la protéine ANP32A dans les cellules de poulet que le virus de l’influenzae aviaire utilise pour la réplication. Les scientifiques sont issus de l’Université d’Édimbourg, de l’Imperial College de Londres et du Pirbright Institute.

Des résultats prometteurs, mais un seul changement génétique pourrait ne pas suffire

Lorsqu’ils ont exposé des poulets génétiquement modifiés à une dose normale de grippe aviaire H9N2, 9 oiseaux sur 10 sont restés en bonne santé, sans propagation à d’autres poulets. Ensuite, ils ont exposé les oiseaux génétiquement modifiés à une dose artificiellement élevée du virus, constatant que 5 sur 10 ont été infectés, ce qui, selon eux, est un taux bien inférieur à celui des poulets non modifiés exposés à la même dose. L'édition du génome a également permis de limiter la propagation à 1 poulet sur 4 non génétiquement modifié dans le même incubateur, sans transmission aux oiseaux génétiquement modifiés.

L'équipe a dir que la modification d'un seul gène de la protéine ANP32A n'est pas assez robuste pour s'appliquer à la production de volaille, et elle examine la possibilité, en utilisant des cellules de poulet cultivées en laboratoire, de modifier deux protéines supplémentaires, ce qui, selon elles, empêcherait également l'émergence de l‘échappement du virus.

Mike McGrew, chercheur principal de l'étude et travaillant au Roslin Institute de l'Université d'Édimbourg, a dit dans un communiqué de presse que l’influenza aviaire reste une menace, mais que la vaccination pose un certain nombre de défis, notamment en termes de coût.

«L’édition du génome offre une voie prometteuse vers une résistance permanente aux maladies, qui pourrait être transmise de génération en génération, protégeant ainsi les volailles et réduisant les risques pour les humains et les oiseaux sauvages. Nos travaux montrent que pour arrêter la propagation de l’influenza aviaire chez les poulets, il faudra plusieurs changements génétiques simultanés», a-t-il dit.

Wendy Barclay, co-auteure de l'étude à l'Imperial College de Londres, a dit que le travail est une collaboration passionnante qui fusionne l'expertise en virologie avec la capacité génétique de pointe de l'Institut Roslin.

«Bien que nous n'ayons pas encore obtenu la combinaison parfaite de modifications génétiques pour appliquer cette approche sur le terrain, les résultats nous ont beaucoup appris sur le fonctionnement du virus de l’influenza aviaire à l'intérieur de la cellule infectée et sur la manière de ralentir sa réplication», a-t-elle dit.

Avantages et inconvénients de la vaccination, et nouvelles directives européennes

La vaccination des volailles est une stratégie utilisée dans certaines régions d'Asie, notamment en Chine, et a été lancée pour la première fois en Europe, la France ayant récemment introduit la vaccination des canards. L’inconvénient de la vaccination est que les oiseaux vaccinés peuvent parfois encore héberger le virus sans présenter de symptômes, ce qui peut masquer la propagation de la maladie.

Les inquiétudes concernant la vaccination peuvent déclencher des restrictions à l'importation, et fin septembre, le ministère américain de l'Agriculture (USDA) a annoncé des restrictions sur les volailles en provenance de France et de ses partenaires commerciaux, en raison du risque d'importation d’influenza aviaire hautement pathogène aux États-Unis.

Dans le même ordre d'idées, l'Autorité européenne de sécurité des aliments (EFSA) s'est prononcée aujourd'hui sur la vaccination contre l’influenza aviaire chez les volailles, en décrivant les vaccins disponibles et en fournissant des informations sur les stratégies de vaccination.

L'ESFA a déclaré qu'un seul vaccin contre l’influenza aviaire pour la volaille a été approuvé dans l'Union européenne et qu'il n'est pas possible de comparer d'autres vaccins. Il a également ajouté que peu de vaccins ont été testés sur des volailles autres que les poulets.

La vaccination préventive constitue la meilleure stratégie pour réduire le nombre d'épidémies et leur durée et pourrait s'avérer un outil utile dans les zones à haut risque, a dit l'EFSA. En cas d’épidémie, elle recommande la vaccination dans un rayon de 3 km autour de l’épicentre de l’épidémie lorsqu’il se trouve dans des zones à haut risque.

Le groupe a souligné que la vaccination devrait être utilisée parallèlement à d’autres mesures de prévention et de contrôle, telles que la surveillance, la détection précoce et la biosécurité.

Des épidémies frappent davantage d’élevages de dindes aux États-Unis

Suite à une baisse attendue des épidémies d’influenza aviaire au cours de l'été chez les volailles, l’Animal and Plant Health Inspection Service (APHIS) de l'USDA a signalé une légère augmentation récente des événements dans les élevages de volailles, notamment dans un élevage commercial de dindes dans le comté de Jerauld, dans le Dakota du Sud.

Le 10 octobre, l'APHIS a signalé deux autres foyers dans des élevages de dindes, tous deux situés dans le comté de Sanpete, dans l'Utah. Un élevage hébergeant 134 200 dindes et l’autre 7 600 oiseaux.

Des épidémies record chez les volailles aux États-Unis, qui ont débuté en février 2022, ont entraîné une perte record de 58,9 millions d’oiseaux dans 47 États.

samedi 15 janvier 2022

Un médicament contre E coli basé sur CRISPR obtient le feu vert pour un premier essai clinique chez l'homme

«Un médicament contre E. coli basé sur CRISPR obtient le feu vert pour un premier essai clinique chez l'homme», source CIDRAP News.  

La société danoise de technologie du microbiome SNIPR Biome ApS a annoncé cette semaine que la Food and Drug Administration des États-Unis avait approuvé la demande de la société pour lancer le premier essai clinique humain de son médicament à base de CRISPR pour prévenir les infections à Escherichia coli chez les patients cancéreux.

L'essai clinique pour SNIPR001, qui utilise la technologie d'édition d'ADN CRISPR/Cas pour cibler et éradiquer sélectivement les bactéries E. coli dans l'intestin et empêcher la translocation des bactéries dans la circulation sanguine tout en laissant les autres bactéries commensales inchangées, étudiera l'innocuité et la tolérabilité du médicament chez des volontaires sains. Les enquêteurs évalueront également l'effet du SNIPR001 sur E. coli dans l'intestin.

Les patients atteints d'un cancer du sang, de la moelle osseuse et des ganglions lymphatiques courent un risque accru d'infections sanguines potentiellement mortelles en raison des traitements de chimiothérapie immunosuppresseurs et de la translocation de pathogènes depuis l'intestin, et E. coli peut présenter un risque accru de telles infections.

Les responsables de l'entreprise disent qu'ils croient que l'approche pourrait transformer la façon dont les infections à E. coli sont prévenues et traitées, dans les services de cancérologie et au-delà.

«Sur la base de nos données précliniques avec le SNIPR001, nous pensons que notre technologie détient un énorme potentiel dans la conception des médicaments de demain basés sur CRISPR contre les infections potentiellement mortelles et pour moduler les maladies associées au microbiome», a déclaré Milan Zdravkovic, directeur médical de SNIPR Biome, dans un communiqué de presse de la société.

SNIPR Biome a reçu un financement de 3,9 millions de dollars de CARB-X (l'accélérateur biopharmaceutique de lutte contre les bactéries résistantes aux antibiotiques) pour développer le SNIPR001 en mai 2021.

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mardi 26 octobre 2021

Des études dirigées par Princeton renforcent les perspectives de l’édition du génome selon CRISPR

L’image de Caitlin Sedwick est proposée par le département de biologie moléculaire de l'Université de Princeton.
«Des études dirigées par Princeton renforcent les perspectives de l’édition du génome selon le CRISPR», source communiqué de l’Université de Princeton.

La possibilité de modifier le génome en modifiant la séquence d'ADN à l'intérieur d'une cellule vivante est puissante pour la recherche et est très prometteuse pour le traitement des maladies. Cependant, les technologies de l'édition du génome (genome éditing) existantes entraînent fréquemment des mutations indésirables ou peuvent ne pas introduire de changements du tout. Ces problèmes ont empêché le domaine d'atteindre son plein potentiel.

Des chercheurs dirigés par Britt Adamson de Princeton ont découvert un nouvel outil pour améliorer la méthode d'édition du génome selon CRISPR-Cas9. Ils l'appellent Repair-seq, représenté dans l’image comme une loupe. Repair-seq permet aux chercheurs de voir rapidement comment les différents gènes impliqués dans la réparation des dommages à l'ADN (ambulances) affectent la précision et l'efficacité des technologies d'édition du génome.

«Nous savons depuis longtemps que les mécanismes impliqués dans la réparation de l'ADN brisé sont essentiels pour l'édition du génome, car pour modifier la séquence de l'ADN, il faut d'abord le casser», a déclaré Adamson, auteur principal de l'étude et professeur au Département de biologie moléculaire de Princeton. «Mais ces processus sont incroyablement complexes et donc souvent difficiles à démêler.»

Pour réparer l'ADN, les cellules utilisent de nombreux mécanismes différents, chacun impliquant plusieurs gènes travaillant ensemble dans des voies distinctes. Repair-seq permet aux chercheurs de sonder la contribution de chacune de ces voies à la réparation de l'ADN en décrivant comment les mutations observées changent lorsqu'un de ces facteurs est supprimé, et de le faire pour des centaines de gènes simultanément.

Cela permet aux scientifiques de poser des questions de base sur la biologie de la réparation de l'ADN et d'étudier l'impact des mécanismes de réparation de l'ADN sur les technologies d'édition du génome. Adamson et ses collègues ont d'abord appliqué leur méthode à l'une des approches d'édition du génome les plus couramment utilisées, qui utilise la nucléase bactérienne Cas9 pour couper les deux brins de la molécule d'ADN double-brin, créant des lésions appelées cassures double-brin.

«L'édition avec des cassures double-brin a longtemps été le pain et le beurre de l'édition du génome, mais apporter des modifications voulues sans mutations indésirables a été un énorme défi. Nous avons cherché à comprendre les mécanismes derrière autant de ces événements de mutation que possible, estimant que cela pourrait nous aider à optimiser le système», a déclaré Adamson.

Dirigée par le premier auteur Jeff Hussmann, chercheur postdoc dans le laboratoire de Jonathan Weissman, l'équipe a utilisé les données de Repair-seq pour cartographier comment différentes voies de réparation de l'ADN sont liées à des types particuliers de mutations induites par Cas9.

L'analyse de Hussmann a détecté des voies déjà connues ainsi que de nouvelles impliquées dans la réparation des cassures double-brin. Il a également mis en évidence l'énorme complexité et la myriade de systèmes impliqués dans la réparation des cassures double-brin.

L'ensemble des données déterrées dans ce travail est désormais publié sur un portail en ligne que d'autres peuvent utiliser pour interroger les voies de réparation de l'ADN ou des protéines.

Par coïncidence, alors que ces études initiales étaient en cours d'achèvement, une équipe dirigée par David Liu du Broad Institute du MIT et de Harvard développait un système d'édition du génome appelé «prime editing» (ou édition primaire) qui ne repose pas sur la création de cassures double-brin. L'édition primaire a généralement un faible taux de réussite, mais Adamson et Hussmann ont estimé que l'étude des voies de réparation de l'ADN impliquées dans l'édition primaire pourrait aider à identifier des pistes d'amélioration. Ils se sont donc associés à Liu pour étudier l'édition primaire à l'aide de Repair-seq.

«Travailler ensemble a été un énorme avantage», a déclaré Adamson. «Pour nous, ce fut une expérience fantastique de science collaborative et axée sur l'équipe.»

Les chercheurs collaborateurs ont découvert que la capacité d'obtenir les éditions voulues avec l'édition primaire était affectée par les protéines dans une voie de réparation: la voie de réparation des mésappariements de l'ADN. Ils ont ensuite montré que l'inhibition ou le contournement de cette voie améliorait considérablement l'efficacité et la précision des résultats de l’édition primaire, positionnant l'édition primaire pour devenir une technologie d'édition du génome prééminente.

Surtout, ce travail démontre également comment Repair-seq peut être utilisé pour améliorer d'autres technologies d'édition du génome.

Démontrant davantage l'utilité de Repair-seq, les chercheurs collaborateurs l'ont également appliqué à une troisième technologie du système de l'édition du génome, également développée par Liu. Les résultats de cette étude ont été récemment publiés dans Nature Biotechnology.

«Repair-seq est un beau mariage de connaissances technologiques et de connaissances biologiques», a déclaré John Doench, directeur de la recherche et du développement au Genetic Perturbation Program du Broad Institute, qui n'a pas été pas impliqué dans les travaux.

«Et pour le travail sur le prime éditing, quel bel exemple de collaboration ! Les éditeurs primaires se sont souvent avérés difficiles à travailler ensemble, et cet article commence à comprendre pourquoi, tout en lançant de nouvelles solutions», a-t-il ajouté.

«Nous voyons Repair-seq comme un outil qui vous permet de prendre une image détaillée de ce que font vos éditeurs, puis d'évaluer très rapidement, ‘Est-ce un paysage dans lequel je peux me frayer un chemin jusqu'aux principes de conception qui aideront à améliorer le outil?'», a déclaré Adamson. «Nous sommes vraiment ravis d'améliorer Repair-seq et d'explorer ses futures applications.»

«Mapping the genetic landscape of DNA double-strand break repair», by Jeffrey A. Hussmann, Jia Ling, Purnima Ravisankar, Jun Yan, Ann Cirincione, Albert Xu, Danny Simpson, Dian Yang, Anne Bothmer, Cecilia Cotta-Ramusino, Jonathan S. Weissman and Britt Adamson, was published in the October 20 issue of Cell (DOI: 10.1016/j.cell.2021.10.002).

«Enhanced prime editing systems through identification and manipulation of cellular determinants of editing outcomes», by Peter J. Chen, Jeffrey A. Hussmann, Jun Yan, Friederike Knipping, Purnima Ravisankar, Pin-Fang Chen, Cidi Chen, James W. Nelson, Gregory A. Newby, Mustafa Sahin, Mark J. Osborn, Jonathan S. Weissman, Britt Adamson and David R. Liu, was published in the October 14 issue of Cell (DOI: 10.1016/j.cell.2021.09.018).


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lundi 4 octobre 2021

Un système CRISPR/Cas9, capable d'éliminer le gène mcr-1 chromosomique et plasmidique, a le potentiel de servir d'approche thérapeutique pour contrôler la propagation des gènes de résistance mcr-1

Une étude parue dans Antimicrobial Agents and Chemotherapy a pour titre un système CRISPR/Cas9 associé au transposon élimine spécifiquement le gène mcr-1 chromosomique et plasmidique chez Escherichia coli.

Selon Wikipédia, Un élément transposable, appelé aussi transposon ou gène sauteur est une séquence d'ADN capable de se déplacer de manière autonome dans un génome, par un mécanisme appelé transposition.

Un système CRISPR/Cas9, capable d'éliminer le gène mcr-1 chromosomique et plasmidique (gène de résistance à la colistine), a le potentiel de servir d'approche thérapeutique pour contrôler la propagation des gènes de résistance mcr-1.


La colistine, un antibiotique de la famille des polymyxines, fait partie des molécules de derniers recours potentiellement utilisables pour le traitement des patients infectés par des souches d’entérobactéries productrices de carbapénèmases qui peuvent être responsables d’impasses thérapeutiques puisque ces souches sont multirésistantes aux antibiotiques.

Résumé

La propagation mondiale des bactéries résistantes aux antimicrobiens est l'une des menaces les plus graves pour la santé publique. L'émergence du gène mcr-1 a constitué une menace considérable pour les médicaments antimicrobiens car il désactive un antibiotique de dernier recours, la colistine. Il y a eu des articles concernant la mobilisation du gène mcr-1 facilitée par le transposon Tn6330 formé par ISApl1 et une dispersion rapide médiée parmi les espèces d'entérobactéries.
Ici, nous avons développé un système CRISPR/Cas9 flanqué d'ISApl1 dans un plasmide suicide capable d'exercer une guérison spécifique à la séquence contre le plasmide portant mcr-1 et de tuer la souche avec mcr-1 chromosomique. Le système CRISPR/Cas9 transporté par ISApl1 a soit restauré la sensibilité à la colistine dans les souches avec mcr-1 d'origine plasmidique, soit directement éradiqué les bactéries hébergeant mcr-1 d'origine chromosomique en introduisant un CRISPR/Cas9 exogène ciblant le gène mcr-1. Cette méthode est très efficace pour éliminer le gène mcr-1 de Escherichia coli, resensibilisant ainsi ces souches à la colistine. Les autres résultats ont démontré qu'il conférait aux bactéries réceptrices une immunité contre l'acquisition du mcr-1 exogène contenant le plasmide. Les données de la présente étude ont mis en évidence le potentiel du système CRISPR/Cas9 associé au transposon à servir d'approche thérapeutique pour contrôler la dissémination de la résistance à mcr-1 parmi les pathogènes cliniques.

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lundi 7 décembre 2020

Un nouveau test rapide basé sur CRISPR pour le COVID-19 utilise l'appareil photo d'un smartphone et est capable de mesurer la charge virale

Le nouveau test COVID-19 utilise la technologie d'édition des gènes CRISPR et un smartphone pour fournir un résultat de test positif ou négatif et mesurer la charge virale.

«Un nouveau test basé sur CRISPR pour le COVID-19 utilise l'appareil photo d'un smartphone», source
Gladstone Institutes.

Imaginez de vous frottez vos narines, puis de mettre l'écouvillon dans un appareil et obtenez une lecture sur votre téléphone en 15 à 30 minutes qui vous indique si vous êtes infecté par le virus COVID-19.

Telle a été la vision d'une équipe de scientifiques des Instituts Gladstone, de l'Université de Californie à Berkeley (UC Berkeley) et de l'Université de Californie à San Francisco (UCSF). Et maintenant, ils rapportent cette percée scientifique qui les rapproche de faire de cette vision une réalité.

L'un des principaux obstacles à la lutte contre la pandémie du COVID-19 et à la réouverture complète des communautés à travers le pays est la disponibilité de tests rapides de masse. Savoir qui est infecté fournirait des informations précieuses sur la propagation potentielle et la menace du virus pour les décideurs politiques et les citoyens.

Pourtant, les gens doivent souvent attendre plusieurs jours pour leurs résultats, voire plus en cas de retard dans le traitement des tests de laboratoire. Et la situation est aggravée par le fait que la plupart des personnes infectées présentent des symptômes légers ou inexistants, tout en étant porteuses et propagatrices du virus.

Dans une nouvelle étude publiée dans la revue scientifique Cell, l'équipe de Gladstone, UC Berkeley et UCSF a décrit la technologie d'un test CRISPR pour le COVID-19 qui utilise l'appareil photo d'un smartphone pour fournir des résultats précis en moins de 30 minutes.

«Cela a été une tâche urgente pour la communauté scientifique non seulement d'augmenter les tests, mais aussi de fournir de nouvelles options de test», explique Mélanie Ott, directrice du Gladstone Institute of Virology et l'un des chefs de file de l'étude. «Le test que nous avons développé pourrait fournir des tests rapides et peu coûteux pour aider à contrôler la propagation du COVID-19.»

La technique a été conçue en collaboration avec le bio-ingénieur de l'UC Berkeley Daniel Fletcher, ainsi que Jennifer Doudna de chez Gladstone, professeur à l'UC Berkeley, présidente de l'Innovative Genomics Institute et chercheuse à l'Howard Hughes Medical Institute. Doudna a récemment remporté le prix Nobel de chimie 2020 pour avoir co-découvert l'édition du génome de CRISPR-Cas, la technologie qui sous-tend ce travail.

Non seulement leur nouveau test de diagnostic peut générer un résultat positif ou négatif, mais il mesure également la charge virale (ou la concentration de SARS-CoV-2, le virus responsable du COVID-19) dans un échantillon donné.

«Lorsqu'elle est associée à des tests répétés, la mesure de la charge virale pourrait aider à déterminer si une infection augmente ou diminue», a dit Fletcher, qui est également chercheur chez Chan Zuckerberg Biohub. «Surveiller l’évolution de l’infection d’un patient pourrait aider les professionnels de la santé à estimer le stade de l’infection et à prévoir, en temps réel, combien de temps il faudra probablement pour guérir.

Un test plus simple grâce à la détection directe

Les tests COVID-19 actuels utilisent une méthode appelée PCR quantitative, la référence des tests. Cependant, l'un des problèmes liés à l'utilisation de cette technique pour tester le SRAS-CoV-2 est qu'elle nécessite de l'ADN. Le coronavirus est un virus à ARN, ce qui signifie que pour utiliser l'approche PCR, l'ARN viral doit d'abord être converti en ADN. De plus, cette technique repose sur une réaction chimique en deux étapes, comprenant une étape d'amplification pour fournir suffisamment d'ADN pour le rendre détectable. Ainsi, les tests actuels nécessitent généralement des utilisateurs formés, des réactifs spécialisés et un équipement de laboratoire encombrant, ce qui limite considérablement les endroits où les tests peuvent avoir lieu et entraîne des retards dans la réception des résultats.

Comme alternative à la PCR, les scientifiques ont développé des stratégies de test basées sur la technologie d'édition des gènes CRISPR, qui excelle dans l'identification spécifique du matériel génétique.

Tous les diagnostics CRISPR à ce jour ont exigé que l'ARN viral soit converti en ADN et amplifié avant de pouvoir être détecté, ce qui ajoute du temps et de la complexité. En revanche, la nouvelle approche décrite dans cette étude récente saute toutes les étapes de conversion et d'amplification, en utilisant CRISPR pour détecter directement l'ARN viral.

«L'une des raisons pour lesquelles nous sommes enthousiasmés par les diagnostics basés sur CRISPR est la possibilité d'obtenir des résultats rapides et précis au point d'utilisation», explique Doudna. «Ceci est particulièrement utile dans les endroits où l'accès aux tests est limité ou lorsque des tests fréquents et rapides sont nécessaires. Cela pourrait éliminer de nombreux goulots d'étranglement que nous avons constatés avec le COVID-19.»

Parinaz Fozouni, une étudiante diplômée de l’UCSF travaillant dans le laboratoire d’Ott à Gladstone, travaillait depuis quelques années sur un système de détection d’ARN pour le VIH. Mais en janvier 2020, lorsqu'il est devenu clair que le coronavirus devenait un problème plus important dans le monde et que les tests étaient un écueil potentiel, elle et ses collègues ont décidé de se concentrer sur COVID-19.

«Nous savions que le test que nous développions serait une solution logique pour aider à la crise en permettant des tests rapides avec un minimum de ressources», a dit Fozouni, co-premier auteur de l'article, avec Sungmin Son et María Díaz de León Derby de l'équipe de Fletcher de l'UC Berkeley. «Au lieu de la protéine CRISPR bien connue appelée Cas9, qui reconnaît et clive l'ADN, nous avons utilisé Cas13, qui clive l'ARN.»

Dans le nouveau test, la protéine Cas13 est combinée avec une molécule rapporteur qui devient fluorescente lorsqu'elle est coupée, puis mélangée à un échantillon de patient provenant d'un écouvillon nasal. L'échantillon est placé dans un appareil qui se connecte à un smartphone. Si l'échantillon contient de l'ARN du SARS-CoV-2, Cas13 sera activé et coupera la molécule rapporteur, provoquant l'émission d'un signal fluorescent. Ensuite, l'appareil photo du smartphone, essentiellement converti en microscope, peut détecter la fluorescence et signaler qu'un écouvillon a été testé positif pour le virus.

«Ce qui rend vraiment ce test unique, c'est qu'il utilise une réaction en une étape pour tester directement l'ARN viral, par opposition au processus en deux étapes dans les tests PCR traditionnels», explique Ott, qui est également professeur au Département de médecine. à l'UCSF. «Une chimie plus simple, associée à l'appareil photo du smartphone, réduit le temps de détection et ne nécessite pas d'équipement de laboratoire complexe. Cela permet également au test de produire des mesures quantitatives plutôt qu'un simple résultat positif ou négatif.»

Les chercheurs disent également que leur test pourrait être adapté à une variété de téléphones mobiles, rendant la technologie facilement accessible.

«Nous avons choisi d'utiliser les téléphones mobiles comme base de notre dispositif de détection car ils disposent d'interfaces utilisateur intuitives et d'appareil photo très sensibles que nous pouvons utiliser pour détecter la fluorescence», explique Fletcher. «Les téléphones portables sont également produits en masse et rentables, ce qui montre que les instruments de laboratoire spécialisés ne sont pas nécessaires pour ce test.»

Des résultats précis et rapides pour limiter la pandémie

Lorsque les scientifiques ont testé leur appareil à l'aide d'échantillons de patients, ils ont confirmé qu'il pouvait fournir un délai d'exécution très rapide des résultats pour les échantillons présentant des charges virales cliniquement pertinentes. En fait, l'appareil a détecté avec précision un ensemble d'échantillons positifs en moins de 5 minutes. Pour les échantillons à faible charge virale, le dispositif a nécessité jusqu'à 30 minutes pour le distinguer d'un test négatif.

«Les modèles récents de SRAS-CoV-2 suggèrent que des tests fréquents avec un délai d'exécution rapide sont ce dont nous avons besoin pour surmonter la pandémie actuelle», a dit Ott. «Nous espérons qu'avec une augmentation des tests, nous pourrons éviter les confinements et protéger les populations les plus vulnérables.»

Non seulement le nouveau test basé sur CRISPR offre une option prometteuse pour les tests rapides, mais en utilisant un smartphone et en évitant le besoin d'équipement de laboratoire volumineux, il a le potentiel de devenir portable et éventuellement d'être disponible pour un point d'utilisation ou même à la maison. Et, il pourrait également être étendu pour diagnostiquer d'autres virus respiratoires au-delà du SRAS-CoV-2.

En outre, la haute sensibilité des appareils photos des smartphones, ainsi que leurs capacités de connectivité, de GPS et de traitement de données, en ont fait des outils attrayants pour diagnostiquer les maladies dans les régions à faibles ressources.

«Nous espérons développer notre test en un appareil capable de télécharger instantanément les résultats dans des systèmes basés sur le cloud tout en préservant la confidentialité des patients, ce qui serait important pour la recherche des contacts et les études épidémiologiques», a dit Ott. «Ce type de test de diagnostic basé sur un smartphone pourrait jouer un rôle crucial dans le contrôle des pandémies actuelles et futures.»

Une équipe de scientifiques de Gladstone, UC Berkeley et UC San Francisco, dont Melanie Ott (à gauche) et Parinaz Fozouni (à droite), a décrit la technologie d'un test rapide avec un smatphone en une étape qui pourrait aider à combattre la pandémie et à rouvrir complètement les communautés.

samedi 17 octobre 2020

Réécriture du génome, éthique et confiance, un avis de l’Académie d’agriculture de France

Communiqué de l'Académie d'Agriculture du 14 octobre 2020, Prix Nobel de chimie 2020 et avis de l’Académie d’agriculture de France sur le thème « Réécriture du génome, éthique et confiance ».

Le prix Nobel de chimie 2020 est décerné à Emmanuelle CHARPENTIER et Jennifer DOUDNA pour leur découverte du système CRISPR-Cas. Cet outil très puissant pourrait trouver de multiples applications dans les domaines de l’agriculture, de l’élevage ou de la forêt. Aussi, dès 2017, l’Académie d’agriculture de France (AAF) a-t-elle initié une réflexion large et approfondie autour des pistes nouvelles ainsi ouvertes et des questions, voire des risques, que leur application pourrait entraîner, en mettant en place un groupe de travail où étaient représentées toutes les sections de l’Académie. Bertrand Hervieu et Paul Vialle, rapporteurs du groupe de travail, ont animé les débats sur ce thème très sensible.

L’avis sur la « Réécriture du génome, éthique et confiance » dans le cas des plantes cultivées, de la forêt et des animaux d’élevage a été approuvé en séance plénière de l’Académie d’agriculture de France le 8 janvier 2020 par plus de 80% des votants.

Au terme de ces travaux, l’Académie énonce 8 recommandations selon 4 principes directeurs pour guider l‘action :
  • Agir de façon responsable,
  • Respecter le principe de précaution,
  • Associer largement le public. Informer. Agir de façon transparente,
  • Procéder à des réévaluations régulières.
L’avis analyse ces technologies de réécriture du génome (dont celle de CRISPR Cas 9), plus précises, plus rapides, que les méthodes antérieures, mais dans certains cas impossibles à distinguer par la suite. Sur des exemples concrets très divers, il ressort que chaque cas est singulier, et que cette diversité doit être prise en considération tant au niveau des bénéfices que des risques éventuels.

Pendant les travaux de l’Académie, la Cour de justice de l’Union européenne, sur la base de la directive européenne 2001-18, a rendu une décision classant les produits issus de ces techniques parmi les OGM, indépendamment de l’évolution scientifique de ces 20 dernières années.

L’Académie affirme le bien-fondé d’utiliser ces techniques pour des objectifs de recherche cognitive, comme c’est déjà le cas en santé humaine. Elle est convaincue que certaines de leurs applications peuvent faire partie des solutions pour contribuer à relever les défis mondiaux urgents : biodiversité, changement climatique, évolution de la population mondiale, et qu’elles peuvent s’inscrire dans les priorités politiques actuelles, comme l’agroécologie ou le bien-être animal.

L’AAF maintient la nécessité d’une autorisation préalable dans le cadre de l’article 7 de la directive 2001-18 instaurant une procédure différenciée - apparemment jamais utilisée - mais avec des dossiers mieux calibrés et un suivi des autorisations, limitées dans le temps et révocables, auxquelles il pourrait être mis fin sans irréversibilité. Pour éviter le décalage entre science, droit et société, elle propose une révision tous les 7 ans des textes régissant ces domaines, comme pour le Conseil consultatif national d’éthique.

L’Académie demande avec insistance aux pouvoirs publics de sortir d’une position attentiste. Enfin, elle souhaite contribuer à cette évolution et, pour ce faire, est prête à solliciter et accompagner les législateurs, en lien avec d’autres académies françaises et européennes.

Sur ce sujet, on lira aussi l'article de seppi, Le Prix Nobel de Mme Emmanuelle Charpentier et les cocoricouacs du gouvernement,
Où l'on découvre soudain que Mme Emmanuelle Charpentier est française... mais les applications agricoles de sa découverte sont interdites de séjour en France. Et notre personnel politique a fait fort dans les cocoricouacs. Mais il n'est pas trop tard pour utiliser ce Prix Nobel pour faire de la pédagogie.

Complément du 19 octobre 2020. On lira Emmanuelle Charpentier prix Nobel de Chimie, France prix Nobel d’Idéologie, article de Jean-Paul Oury dans European scientist du 16 octobre 2020. 

jeudi 15 octobre 2020

Les écologistes doivent s'adapter à un monde qui change, selon Emmanuelle Charpentier

 Un tweet de M. Emmanuel Rumy me va droit au coeur  ... et je voulais vous en faire profiter ...

Complément du 19 octobre 2020. On lira Emmanuelle Charpentier prix Nobel de Chimie, France prix Nobel d’Idéologie, article de Jean-Paul Oury dans European scientist du 16 octobre 2020.

 

mercredi 7 octobre 2020

Le Nobel de chimie à la Française Emmanuelle Charpentier et l'Américaine Jennifer Doudna

Selon Le Figaro.fr, 

C'est un duo de généticiennes, la Française Emmanuelle Charpentier (51 ans) et l'Américaine Jennifer Doudna (56 ans), que vient distinguer le Prix Nobel de Chimie cette année. Leur collaboration a permis la mise au point de la technologie «Crispr-Cas9», souvent présentée comme un «ciseau génétique» de précision, permettant d'éditer l'ADN au sein même d'une cellule. Respectivement directrice du centre de recherche Max Planck pour la Science des pathogènes à Berlin et professeur à l'Université Berkeley en Californie, les deux lauréates deviennent les sixième et septième femmes à remporter un Nobel de chimie depuis 1901.

Le blog avait consacré le 4 mai 2016 un article, « Portrait d’une scientifique, Emmanuelle Charpentier ».

« La révolutionnaire tranquille : Comment la codécouverte du CRISPR a changé de façon explosive la vie d’Emmanuelle Charpentier », source article d’Alison Abbott paru dans Nature.

La microbiologiste a passé des années à changer de laboratoires et à savourer la solitude. Ensuite, son travail sur l’édition génomique l’a mise sous les projecteurs des scientifiques.

Toutes nos félicitations à Emmanuelle Charpentier et à Jennifer Doudna !

On lira un autre point de vue intéressant,

Dans un autre tweet, Mme Géraldine Woessner a écrit,
Il y a de quoi pleurer... Une française obtient le prix Nobel. Sa découverte permettrait une vraie révolution de l’agriculture : moins de pesticides, moins d’eau... Mais l’Europe l’INTERDIT par idéologie absurde...
Mise à jour du 8 octobre 2020. On lira dans Agriculture & EnvironnementLa merveilleuse aventure des pionniers de CRISPR-Cas9.

CRISPR-Cas9 représente un espoir formidable dans la mise au point de traitements de pathologies héréditaires liées à la mutation d'un gène unique.
Cette technique, appliquée dans le cadre de la thérapie génique, pourrait constituer un moyen de modifier, éteindre ou rétablir les pleines fonctionnalités d'un gène et ainsi traiter la pathologie qui en résulte. Ce système est également prometteur pour le développement des nouvelles immunothérapies contre le cancer (CAR-T cells).

Pas un mot sur l'utilisation en agriculture ... 

Il y aussi ce tweet intéressant de Gil Rivière-Wekstein

Complément du 19 octobre 2020. On lira Emmanuelle Charpentier prix Nobel de Chimie, France prix Nobel d’Idéologie, article de Jean-Paul Oury dans European scientist du 16 octobre 2020. 

mercredi 25 septembre 2019

Une nouvelle découverte permet de cartographier le système de défense CRISPR-Cas chez les bactéries


Complexe protéique CSX1
« Une nouvelle découverte permet de cartographier le système de défense CRISPR-Cas chez les bactéries », source communiqué de l’Université de Copenhague.

Pour la toute première fois, des chercheurs de l'Université de Copenhague ont cartographié les mécanismes par lesquels les cellules bactériennes déclenchent leur défense contre les attaques extérieures. Cela pourrait affecter la manière dont les maladies seront combattues à l'avenir.

Grâce à des microscopes très avancés et à des sources du synchrotron, des chercheurs de l’Université de Copenhague ont acquis une connaissance précieuse du fonctionnement des bactéries en tant que mécanismes de défense contre les attaques d’autres bactéries et de virus.

L’étude, qui vient de paraître dans Nature Communications, décrit également comment les systèmes de défense peuvent être activés au bon moment. Cette découverte peut s'avérer être une pierre angulaire importante dans la lutte contre les maladies à l'avenir.

Les chercheurs ont montré comment une cellule attaquée par un virus active une molécule appelée COA (oligoadénylate cyclique), qui à son tour active un complexe protéique appelé CSX1 pour éradiquer l'attaquant.

« En termes populaires, le CSX1 commence à couper l’intrus. Nous pouvons voir comment CSX1 est activé, tourne et commence à défendre la cellule, une fois la COA activée », explique le Professeur Guillermo Montoya du Centre de recherche sur les protéines de la Fondation Novo Nordisk de la Faculté de santé et de médecine.

Peut aider à combattre les maladies
Les chercheurs de l'Université de Copenhague ont également réussi à activer eux-mêmes le processus. Ils ont envoyé une molécule de COA après le complexe protéique, pour ainsi dire, et ont ainsi lancé le mécanisme de défense.

« En bref, nous avons trouvé un commutateur qui active le système de défense de la cellule quand nous le voulons et nous pouvons ainsi diffuser les attaques éventuelles », explique Guillermo Montoya.

C'est la première fois que des chercheurs réussissent à cartographier et à activer un ‘système immunitaire’ bactérien.

« Il y a quelques années, la science n’était même pas au courant que les bactéries avaient un système de défense immunitaire. Avec cette découverte, nous avons beaucoup progressé dans la compréhension de ces mécanismes », explique Guillermo Montoya.

De plus, la découverte est intéressante parce que le système de défense des bactéries ressemble beaucoup au système immunitaire inné de l'homme.

« C’est donc aussi un pas en avant pour mieux comprendre le système immunitaire humain, mais aussi pour savoir comment combattre les bactéries et se défendre contre les virus et, à long terme, même les résistances multiples », déclare Guillermo Montoya.

Des molécules minimes et une énorme loupe
La découverte d’un système de défense des bactéries a été rendue possible par l’utilisation de la cristallographie aux rayons X dans un établissement en Suisse et de l’un des microscopes les plus puissants au monde - le synchrotron MAX IV - situé à Lund, en Suède.

L’image du complexe protéique CSX1 a été rendue possible par le microscope électronique cryogénique perfectionné de l’installation de haute technologie CryoEM de l’Université de Copenhague - en gros un verre très grossissant.

« Le CSX1 mesure environ 0,00005 mm de long. Cela équivaut à couper un millimètre en 10 000 tranches, puis à placer cinq morceaux les uns sur les autres. Nous avons pris des photos une à une et avons réalisé un court métrage qui révèle l’activité de CSX1 », explique Guillermo Montoya.

jeudi 15 août 2019

Des chercheurs zurichois font évoluer la méthode Crispr/Cas dite des « ciseaux moléculaires »


Les gènes et les protéines dans les cellules interagissent de nombreuses manières. Chaque point représente un gène, les connexions de leurs interactions. Avec la nouvelle méthode, il est possible pour la première fois d'influencer de manière biotechnologique des réseaux de gènes entiers en une seule étape. (Graphique: ETH Zurich / Carlo Cosimo Campa)
Des chercheurs zurichois font évoluer la méthode Crispr/Cas dite des « ciseaux moléculaires », source ATS/AGIR.

Il est désormais possible de modifier simultanément des dizaines, voire des centaines de gènes dans une cellule.

La première publication sur Crispr/Cas remonte à 2012. Depuis, la méthode s'est imposée en recherche biologique fondamentale et dans d'autres domaines, comme la sélection des plantes pour l'agriculture. Crispr/Cas permet de supprimer, remplacer ou modifier certains gènes de manière relativement simple et rapide dans les cellules. 

Depuis quelques années, les chercheurs peuvent aussi augmenter ou réduire l'activité de certains gènes, a indiqué aujourd’hui l'Ecole polytechnique fédérale de Zurich (EPFZ) dans un communiqué.

Jusqu'ici, les chercheurs ne pouvaient intervenir que sur un gène à la fois par cellule, dans de rares cas sur deux ou trois simultanément, voire sept, le record actuel en la matière. Or certains processus cellulaires et facteurs de risque de maladies impliquent des dizaines de gènes, et la communauté scientifique était à la recherche d'une « mise à niveau » des ciseaux génétiques.

C'est ce que propose l'équipe de Randall Platt, du Département des biosystèmes de l'EPFZ à Bâle dans la revue Nature Methods

L'expérience décrit la modification d'une cellule à 25 endroits différents du génome. Selon le professeur, ce nombre peut même être augmenté, à plusieurs dizaines, voire plusieurs centaines de gènes. « Grâce à ce nouvel outil, nous pouvons mettre en pratique ce dont nous ne pouvions auparavant que rêver », dit-il, cité dans le communiqué.